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Calendrier scientifique – Décembre 2025

Analyse du liquide synovial après une arthroplastie du genou

Quel est le composant principal qui augmente la viscosité et l’élasticité du liquide synovial?

L’acide hyaluronique

La lubricine

Le fibrinogène

L’albumine

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Contexte scientifique

Le diagnostic des troubles articulaires repose sur différentes observations et méthodes, telles que les signes cliniques, les résultats radiologiques et les analyses en laboratoire du liquide synovial [1]. Le liquide synovial provient d’un ultrafiltrat du plasma qui traverse la membrane synoviale dans la cavité articulaire, où il s’enrichit en acide hyaluronique sécrété par les cellules de la membrane synoviale [1]. Les analyses en laboratoire du liquide synovial consistent en plusieurs tests comprenant l’examen microbiologique, les numérations et différentiations cellulaires, les mesures de protéine C réactive (CRP pour C-Reactive Protein) et de glucose, ou encore l’évaluation de la présence de cristaux. La prise en charge des patients atteints d’infections articulaires est souvent basée sur les résultats de numération des globules blancs (WBC pour White Blood Cell) ; une numération et une différenciation précises sont par conséquent importantes [2–4].

La numération cellulaire dans le liquide synovial peut être effectuée manuellement à l’aide d’une chambre de comptage, ou automatiquement par un analyseur hématologique. Bien que la méthode manuelle soit considérée comme la technique de référence, elle comporte plusieurs limitations : temps de traitement long, imprécision élevée et variabilité interpersonnelle [1–2, 4]. Les procédés automatisés sont par conséquent devenus une pratique courante pour l’analyse des liquides biologiques [1, 2]. Les échantillons synoviaux doivent toutefois être validés avec soin, car des études ont démontré que les procédés automatisés peuvent donner des numérations faussement élevées, en particulier chez les patients ayant subi une arthroplastie [2, 4–5].

Il est particulièrement important que le personnel de laboratoire s’applique à détecter les interférences entraînant une fausse élévation de la numération des leucocytes, notamment pour l’analyse du liquide synovial des patients ayant subi une arthroplastie du genou, afin d’éviter de faux résultats [2]. Vanrenterghem et al. (2024) ont observé que le dépôt de particules non cellulaires dans le liquide synovial pourrait être une cause d’interférences dans la numération des leucocytes obtenue par les analyseurs automatisés [2]. Pearson et al. (2021) décrivent la métallose, une complication rare survenant en raison de l’érosion métallique et de la libération de particules métalliques après une arthroplastie, comme une cause potentielle de numérations cellulaires faussement élevées par les analyseurs automatisés [4]. Les deux auteurs soupçonnent que ces particules non cellulaires peuvent être comptées comme des cellules nucléées, ce qui conduit à une numération cellulaire faussement élevée [2, 4].

Vanrenterghem et al. (2024) ont par conséquent introduit un flux de travail s'appuyant sur l’interprétation des diagrammes de dispersion (ou scattergrammes). Grâce à la reconnaissance d’un motif distinct « en forme de banane » dans le diagramme de dispersion WDF durant son inspection visuelle, le laboratoire a pu éviter une surévaluation de la numération des leucocytes. Cela a permis de continuer à utiliser les analyseurs hématologiques automatisés même pour les patients ayant subi une arthroplastie, tout en assurant des résultats de numération cellulaire précis [2].

Résultats de cas

Un patient ayant subi une arthroplastie du genou a été soumis à une tomodensitométrie et à une arthrocentèse afin d’identifier la cause de la tuméfaction de son articulation. L’analyse de l’échantillon de liquide synovial par l’analyseur hématologique XN en mode Liquide biologique (BF pour Body Fluid) a révélé des valeurs de leucocytes fortement augmentées (8,215 × 103/µL), consistant principalement en des cellules mononucléaires (MN# 7,861 × 103/µL, MN% 95,7 %).

Le diagramme de dispersion WDF a montré un motif atypique « en forme de banane » avec une haute concentration de particules sur l’ensemble du diagramme de dispersion, y compris dans la zone de forte intensité lumineuse fluorescente (zone bleu foncé). Les amas cellulaires étaient insuffisamment séparés.

Une cytocentrifugation a été préparée et examinée au microscope. Elle a principalement montré des particules de débris d’origine inconnue, mais pratiquement aucun leucocyte (voir fig. 3). Ce résultat a mis en évidence la possibilité que ces particules non cellulaires interféraient avec la numération cellulaire automatique de l’analyseur, entraînant une augmentation erronée de la numération des leucocytes.

La tomodensitométrie du patient a révélé des complications suggérant la formation d’un kyste et le détachement de la composante tibiale.

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